資訊
頻道
當前位置:首頁 > 醫(yī)療器械資訊 > 學術(shù)論文 > 骨髓基質(zhì)細胞遷移機制研究進展

骨髓基質(zhì)細胞遷移機制研究進展

文章來源:創(chuàng)新醫(yī)學網(wǎng)發(fā)布日期:2013-03-05瀏覽次數(shù):29602

 作者:李興澤,孟慶海,金澎  作者單位:青島大學醫(yī)學院附屬醫(yī)院神經(jīng)外科,山東 青島 266003

  【關(guān)鍵詞】 骨髓基質(zhì)細胞 炎癥趨化因子類 細胞黏附分子 遷移

  骨髓基質(zhì)細胞(BMSC)是骨髓細胞中除去造血干細胞(非黏附細胞)之外的黏附細胞部分,也稱為塑料黏附細胞、克隆形成單位成纖維細胞或骨髓間充質(zhì)干細胞(MSC)。BMSC向組織遷移及穿過內(nèi)皮的機制還不清楚,很可能通過損傷組織表達特殊的受體或配體促進BMSC向其遷移。趨化因子受體及其配體是影響白細胞向炎癥區(qū)遷移過程中的重要成分。近的研究表明, BMSC也表達趨化因子受體及配體。另外,一些在白細胞遷移、穿過內(nèi)皮細胞過程起重要作用的黏附分子在BMSC中也有表達。
  1 趨化因子及其受體

  1.1 趨化因子

  趨化因子是一類小分子分泌蛋白,參與炎癥和免疫應(yīng)答過程,如誘導(dǎo)淋巴細胞游走到炎癥部位、參與天然免疫和獲得性免疫應(yīng)答、刺激或抑制血管的生成、抑制病毒感染和增強細胞毒T淋巴細胞應(yīng)答等。現(xiàn)已發(fā)現(xiàn)的趨化因子有50多種,它們均含有4個半胱氨酸,并在內(nèi)部形成2個二硫鍵,根據(jù)其分子N端半胱氨酸殘基(Cys或C)的數(shù)目和排列位置可分為4個亞家族,即CXC、CC、C和CX3C亞家族[1]。CXC、CC、CX3C亞家族均含有4個Cys,其中CXC亞家族中前2個Cys被一個氨基酸隔開,而在CC家族中2個Cys則直接相鄰。CXC亞家族主要作用于中性粒細胞、淋巴細胞和單核細胞。CC亞家族主要作用于單核細胞、淋巴細胞、嗜酸性粒細胞和嗜堿性粒細胞。CX3C亞家族即fractalkine(又稱neurotactin),作用于自然殺傷細胞、活性T細胞和單核細胞。C亞家族有2個成員,即Lymphotac2tin/XCL1和SCM21h/XCL2,它們由2個Cys組成,僅作用于淋巴細胞。根據(jù)功能可把趨化因子分為2類:一類稱為炎癥型(誘導(dǎo)型)趨化因子,主要參與免疫調(diào)節(jié),由脂多糖和細胞因子刺激產(chǎn)生和調(diào)節(jié)。在炎癥時其直接與病原接觸,迅速聚集單核細胞、粒細胞產(chǎn)生炎性反應(yīng)。另一類稱為自穩(wěn)型(構(gòu)成型)趨化因子,主要調(diào)節(jié)免疫細胞的移行和淋巴細胞的形成與活化。
  1.2 趨化因子受體

  趨化因子受體屬于G蛋白耦聯(lián)受體超家族成員,該受體為含有7個疏水性氨基酸的α螺旋穿膜區(qū)結(jié)構(gòu)的單鏈受體,經(jīng)異源三聚體G蛋白傳遞信號。趨化因子受體根據(jù)其對應(yīng)的趨化因子分類。目前共發(fā)現(xiàn)19種趨化因子受體,其中有6個CXC受體CCXCR1~CXCR5),11個CC受體(CCR1~CCR11),CX3CR1和XCR1[1]。
  研究發(fā)現(xiàn)趨化因子和受體之間的作用關(guān)系是極其復(fù)雜的。如除單一的配體2受體結(jié)合方式外,還有更復(fù)雜的結(jié)合方式,一種趨化因子受體可以與多種趨化因子結(jié)合,同時一種趨化因子也可以與多種受體結(jié)合,這種交叉反應(yīng)性給單個CK特定功能的研究造成一定的困難。
  2 趨化因子受體在BMSC上的表達

  BMSC有從循環(huán)中遷移到損傷組織中的能力,可能是對損傷中上調(diào)的信號的反應(yīng)。盡管BMSCs穿過內(nèi)皮細胞層及向損傷組織遷移的機制還不清楚,但趨化因子及受體可能在其中起著重要的作用,因為他們是控制細胞遷移的重要因素。趨化因子在其他類型的祖細胞遷移中作用的研究已有報道,例如CXCL12(SDF21)及其受體CXCR4在骨髓的記憶、遷移、歸巢造血干細胞中起重要作用[2]。
  闡明BMSC遷移的調(diào)節(jié)機制是任何涉及BMSC臨床治療策略成功的決定性因素。因此,研究BMSC在特定生理環(huán)境條件下的趨化因子受體表達譜和功能性意義顯得非常重要。然而,BMSC的趨化因子受體表達研究剛剛起步,近來許多組織研究了趨化因子受體在BMSC上表達,結(jié)果不盡相同。
  WYNN等[3]檢測了CXCR4在人BMSC上的表達,顯示只有1%細胞細胞膜上表達CXCR4,而細胞內(nèi)CXCR4的表達卻很高,高達83%~98%。VON LaTICHAU等[4]報道了CCR1、CCR4、CCR7、CXCR5、CCR10在BMSC上的表達,這些受體在BMSC的遷移中起作用,但沒有CXCR4的表達。其他的報道顯示了CXCR4的功能性表達[5];少數(shù)細胞(2%~25%)功能性表達CCR1、 CCR7、CXCR4、CXCR6和 CX3CR1[6];另外,也有部分BMSC功能性表達CXCR4、CX3CR1[7]。然而,這些報道沒有研究功能性趨化性因子受體在蛋白水平上的表達。近有學者用流式細胞儀檢測了CCR(除CCR10)、CXCR和CX3CR1的表達[8],發(fā)現(xiàn)43%~70%的BMSC細胞功能性表達(通過趨化性實驗檢測)CCR1、CCR7、CCR9、CXCR4、CXCR5和CXCR6。另一組用RT2PCR和免疫組化技術(shù)檢測了BMSC對CCR2、CCR8、CXCR1、CXCR2、和CXCR3的表達[9]。PONTE等[10]檢測了CCR2、CCR3、CCR4和CXCR4在hBMSC的表達,并發(fā)現(xiàn)TNF2α能增強CCR2、CCR3和CCR4的表達,但對CXCR4無影響。JI等[11]分離和體外培養(yǎng)大鼠BMSC,用流式細胞術(shù)(FCAS)和RT2PCR技術(shù)分別檢測了第4代以內(nèi)細胞表面4種趨化因子受體(CCR2、CCR5、CXCR4和CX3CR1)以及這些受體轉(zhuǎn)錄基因的表達情況。結(jié)果全部受體為陽性表達,且這些受體定位于BMSC的細胞膜和細胞漿。BMSCs表達多種趨化因子受體,但各報道各不相同。這反映了培養(yǎng)的BMSC的異質(zhì)性。VON LaTICHAU等[4]用V40T抗原的重組逆轉(zhuǎn)錄病毒感染人骨髓來源的CD342BMSC,并進行條件永生化,經(jīng)亞克隆和免疫表型特征鑒定,建立典型的BMSC細胞系CD73(SH3)+、CD105(SH2)+、CD34-、CD14-、CD45-和MHC2Ⅱ類。接著,在同樣的實驗條件下比較原代培養(yǎng)的CD342BMSC和永生化細胞系,結(jié)果二者的趨化因子受體表達譜具有可比性,即二者細胞表面都表達CCR1、CCR4、CCR7、CCR10和CXCR5。而實時定量RT2PCR可檢測到除CCR2和CCR6外的所有受體的mRNA。由此得出同一標本不同亞群細胞之間的差異不是CK受體表達譜異質(zhì)性的主要原因的結(jié)論。因而推測培養(yǎng)條件和培養(yǎng)時間是影響異質(zhì)性的關(guān)鍵因素。HONCZARENKO等[8]評價了BMSC長期培養(yǎng)對CK受體表達的影響,結(jié)果BMSC培養(yǎng)至第12代FACS僅檢測出24%~41%的CK受體陽性細胞,第16代降至0~16%。流式細胞的分析圖像顯現(xiàn)出2個峰,表明在整個細胞群體中受體表達下降或喪失不是一致的,一些細胞仍保持高水平的受體表達,而大多數(shù)亞群完全不表達受體。同時,長期培養(yǎng)擴增的BMSC顯示出表型的改變和自發(fā)凋亡,如黏附分子(ICAM21、ICAM22和VCAM21)和間充質(zhì)細胞標記物CD157的表達喪失,表明這些細胞逐漸向成熟細胞分化。BMSC表達不同的趨化因子受體表明它們有向不同組織遷移的潛能,并修復(fù)組織及減輕炎癥。CK受體在BMSC表達的特點可歸納如下:①BMSC存在特定的CK受體表達譜;②CK受體在BMSC的表達呈異質(zhì)性;③培養(yǎng)條件和培養(yǎng)時間是影響CK受體表達的關(guān)鍵因素。
  3 黏附分子與BMSC的遷移
  黏附分子是一類介導(dǎo)細胞與細胞、細胞與細胞外基質(zhì)間黏附作用的膜表面糖蛋白。它們在炎癥與免疫應(yīng)答、腫瘤浸潤和轉(zhuǎn)移等多種病理過程中具有重要的作用。
  RUSTER等[12]近研究表明, P2selectin及其配體參與hBMSC的外滲。通過活體顯微鏡觀察,由靜脈注入的hMSCs能沿著鼠耳靜脈血管壁滾動,而這種現(xiàn)象在P2selectin基因缺陷的鼠中大大減低,又在體外實驗中觀察到P2selectin抗體能明顯減少hBMSC沿臍靜脈血管內(nèi)皮細胞的滾動。因為hBMSC既不表達P2selectin糖蛋白1,也不表達選擇性配體CD24,表明hBMSC表達一種新型的與內(nèi)皮細胞上的P2selectin相對應(yīng)配體。這些數(shù)據(jù)表明hBMSC像白細胞一樣,沿著內(nèi)皮細胞滾動是遷移的步。有文獻報道,E2selectins和L2selectins在hBMSC中表達,它們在BMSC的遷移中可能起重要的作用[13]。
  許多整合素分子,如α1、α2、α3、α4、α5、αv、β1、β3、β4 在hBMSC上的表達已有報道,hBMSC也表達黏附分子,包括VCAM21、ICAM21、ICAM23、ALCAM和endoglin/CD105[14],大約50%的hBMSC被認為表達VLA24(α4β1,D49d)。用中和抗體的方法研究顯示,hBMSC依靠VLA24對內(nèi)皮細胞有很大的黏附性[13]。另外,如果用抗體阻斷其相應(yīng)的黏附分子VCAM21,則能夠減弱hMSCs的黏附性。這表明VLA24/VCAM21軸介導(dǎo)hBMSC和內(nèi)皮細胞間的黏附。BROOKE等[15]證實了MSCs表達大量的黏附分子,包括CD29、CD49、CD54、CD56、CD106、CD51,并參與MSCs的遷移。
  SEGERS等[16]用TNF2α預(yù)處理鼠的心臟,將BMSC注入左心室,24 h后觀察其在微血管中的遷移。結(jié)果顯示TNF2α能明顯提高CMVE上的黏附分子的表達。同樣,用抗體阻斷VCAM21能明顯降低BMSC對內(nèi)皮細胞的黏附。
  現(xiàn)已證實, BMSC能遷移到燒傷模型等的外周血中[17]。比較動員的、循環(huán)中的BMSC和組織來源的BMSC黏附分子表達譜的差別,有助于闡明BMSC的歸巢機制。
  BMSCs能從血循環(huán)中跨過內(nèi)皮細胞遷移到組織,但是BMSC穿越內(nèi)皮細胞的機制及哪些黏附分子參與還不清楚。SCHMIDT 等[18]在體外將人BMSC與不同來源的內(nèi)皮細胞共同培養(yǎng),研究BMSC的遷移機制。30 min后BMSC出現(xiàn)形態(tài)學上的改變, 2 h后細胞變扁,進而與內(nèi)皮細胞層整合。結(jié)果表明,即使在體外,剪切流存在時,人BMSC能有效地與內(nèi)皮細胞接觸并穿越內(nèi)皮細胞層。主動脈插管灌注BMSC的體內(nèi)研究表明, BMSC灌注后30 min,30%的細胞穿越了內(nèi)皮組織,60 min后越過內(nèi)皮組織的細胞可達到50%。
  許多參與白細胞貼壁、滾動、黏附、游走的分子,其在BMSCs上也有表達,這些分子包括整合素、選擇素和趨化因子受體。其中,P2selectin、VCAM21在BMSC黏附內(nèi)皮細胞中起重要的作用。而L2selectin在BMSC中很少表達或不表達,E2selectin的作用還不清楚[13]。 PECAM21/CD31參與白細胞的遷移,而在BMSC中卻沒有表達。盡管BMSC遷移的機制與白細胞游走的機制相似,有黏附分子參與,但是具體的參與分子可能不同。
  4 展望

  BMSC用于許多治療方法的研究。BMSC具有向許多組織,特別是損傷組織和在病理條件下遷移的特性。BMSC遷移的具體機制還不明確。盡管許多研究表明,趨化因子及其受體和黏附分子參與BMSC的遷移。研究BMSC趨化因子受體和黏附分子的作用,從而可以使我們提高體外培養(yǎng)BMSC向損傷組織或腫瘤遷移的特性。這將促進多種治療方法的發(fā)展,如促進組織的再生、糾正遺傳紊亂、減緩慢性炎癥及研制用作運載生物學制劑的載體。
  【參考文獻】
  [1]CHARO I, RANSOHOFF R. The many roles of chemokines and chemokine receptors in inflammation[J]. Ngl J Med, 2006,354(6): 6102621.

  [2]LEVESQUE J P, HENDY J, TAKAMATSU Y, et al. Disruption of the CXCR4/CXCL12 chemotactic interaction during hematopoietic stem cell mobilization induced by GCSF or cyclophosphamide[J]. J Clin Invest, 2003,111(2):1872196.

  [3]WYNN R F, HART C A, CORRADI2PERINI C, et al. A small proportion of mesenchymal stem cells strongly expresses functionally active CXCR4 receptor capable of promoting migration to bone marrow[J]. Blood, 2004,104(9):264322645.

  [4]VON LaTICHAU X I V, NOTOHAMIPRODJO M, WECHSELERGER A, et al. Human adult CD342progenitor cells functionally express the chemokine re2ceptors CCR1, CCR4, CCR7, CXCR5, and CCR10 but not CXCR4[J]. Stem Cells Dev, 2005,14(3):3292336.

  [5]KORTESIDIS A, ZANNETTINO A, ISENMANN S, et al. Stromal2derived factor21 promotes the growth, survival, and development of human bone marrow stromal stem cells[J]. Blood, 2005,105(10):379323801.

  [6]SORDI V, MALOSIO M L, MARCHESI F, et al. Bone marrow mesenchyma stem cells express a restricted set of functionally active chemokine receptors capable of promoting migration to pancreatic islets[J]. Blood, 2005,106(2):441924427.

  [7]LEE R H, HSU S C, MUNOZ J, et al. A subset of human rapidly selfrenewing marrow stromal cells preferentially engraft in mice[J]. Blood, 2006,107(5):215322161.

  [8]HONCZARENKO M, LE Y, SWIERKOWSKI M, et al. human bone marrow stromal cells express a distinct set of biologically functional chemokine receptors[J]. Stem Cells, 2006,24(4):103021041.

  [9]RINGE J, STRASSBURG S, NEUMANN K, et al. Towards in situ tissue repair: human mesenchymal stem cells express chemokine receptors CXCR1, CXCR2 and CCR2, and migrate upon stimulation with CXCL8 but not CCL2[J]. J Cell Biochem, 2007,101(1):1352146.

  [10]PONTE A L, MARAIS E, GALLAY N, et al. The in vitro migration capacity of human bone marrow mesenchymal stem cells: comparison of chemokine and growth factor chemotactic activities[J]. Stem Cells, 2007,25(7):173721745.

  [11]JI J F, HE B P, DHEEN S T, et al. Interactions of chemokines and chemokine receptors mediate the migration of mesenchymal stem cells to the impaired site in the brain after hypoglossal nerve injury[J]. Stem Cells, 2004,22(3):4152427.

  [12]RUSTER B, GOTTIG S, LUDWIG R J, et al. Mesenchymal stem cells (MSCs) display coordinated rolling and adhesion behavior on endothelial cells[J]. Blood, 2006,108(12):393823944.

  [13]SHUR I, MAROM R, LOKIEC F, et al. Identification of cultured progenitor cells from human marrow stroma[J]. J Cell Biochem, 2002,87(1):51257.

  [14]KRAMPERA M, PIZZOLO G, APRILI G, et al. Mesenchymal stem cells for bone, cartilage, tendon and skeletal muscle repair[J]. Bone, 2006,39(4):6782683.

  [15]BROOKE G, TONG H, LEVESQUE J P, et al. Molecular trafficking mechanisms of multipotent mesenchymal stem cells derived from human bone marrow and placenta[J]. Stem Cells, 2008,17(5):9292940.

  [16]SEGERS V F, VAN RIET I, ANDRIES L J, et al. Mesenchymal stem cell adhesion to cardiac microvascular endothelium: activators and mechanisms[J]. Am J Physiol Heart Circ Physiol, 2006,290(4): H1370.

  [17]MANSILLA E, MARIN G H, DRAGO H, et al. Blood stream cells phenotypically identical to human mesenchymal bone marrow stem cells circulate in large amounts under the influence of acute large skin damage: new evidence for their use in regenerative medicine[J]. Transplant Proc, 2006,38(3):9672969.

  [18]SCHMIDT A, LADAGE D, STEINGEN C, et al. Mesenchymal stem cells transmigrate over the endothelial barrier[J]. Eur J Cell Biol, 2006,85(11):117921188.